■ 大肠杆菌菌落直接PCR试剂盒(E.coli Colony Direct PCR Kit)是一种使用特别便捷的含有蓝色和橙色染料(电泳位置分别约4kb和50bp)的2倍浓度的PCR预混液，含有2X Taq DNA Polymerase、2X PCR Buffer、2X dNTP和2X Loading Buffer等，只需加入大肠杆菌菌落或菌落稀释物、引物和水即可进行PCR扩增，并且扩增完毕后可以直接上样电泳。本试剂盒主要适用于质粒转化大肠杆菌后阳性克隆的菌落PCR筛选和鉴定。
■ 本试剂盒经过反复优化，确保直接挑取菌落进行PCR的扩增效果良好，菌落的存在不会显著干扰PCR反应。本试剂盒中提供的E.coli Colony Direct PCR Mix (Green, 2X)已经含有所有的通用组分，用户只需自备引物和水即可对大肠杆菌菌落进行PCR扩增。它大大简化了PCR操作，使操作更加快捷，也减少了PCR操作过程中可能导致的污染，使PCR的重复性更好；同时E.coli Colony Direct PCR Mix (Green, 2X)中已经包含了上样缓冲液组分，PCR扩增结束后即可直接上样电泳，无需添加上样缓冲液。本试剂盒扩增效果好。本试剂盒可以扩增出长达8kb的片段，但通常更适合用于扩增2kb以下的DNA片段。本试剂盒中提供了双色染料，便于电泳时观察电泳进程。本产品中加入了蓝色和橙色的电泳示踪染料(整体呈现绿色)，其在浓度为1%琼脂糖胶中的迁移位置分别大约位于4kb和50bp处。PCR结束后可直接进行电泳检测，无需再添加上样缓冲液。蓝色和橙色示踪染料不会影响对相应DNA条带的观察和检测。本产品稳定性高。经测试，本试剂盒反复冻融15次后对PCR的扩增效果无显著影响。

1. 菌落直接PCR反应体系的设置
a. 室温融解E.coli Colony Direct PCR Mix (Green, 2X)，上下颠倒轻轻混匀后低速离心数秒。
b. 参考下表在冰浴上设置PCR反应体系：

注意：
(a) 考虑到PCR产物连接涂板的时候，有部分引物可能会污染菌落，通常做菌落PCR的时候，推荐使用来自克隆载体上的通用引物进行PCR扩增。
(b) 通常引物的终浓度为0.2μM时可获得良好的检测效果，也可以根据情况在0.1-1.0μM范围内调整引物的终浓度。扩增效率不高的情况下，可提高引物的浓度；发生非特异性反应时，可降低引物浓度。
c. 对于要挑取的克隆在平板上做好标记，无菌吸头等挑取平板上对应的克隆，加入到上述预先配制好的20µl PCR反应体系中，轻轻吹打混匀或轻微Vortex混匀，室温离心数秒，使液体积聚于管底。
d. 如果所使用的PCR仪有热盖则省略本步骤。如果PCR仪没有热盖，则在管内滴入一滴矿物油(ST275 Mineral oil)。
e. 把设置好的PCR反应管置于PCR仪上，开始PCR反应。
2. 菌落稀释后检测的PCR反应体系的设置
a. 室温融解E.coli Colony Direct PCR Mix (Green, 2X)，上下颠倒轻轻混匀后低速离心数秒。
b. 参考下表在冰浴上设置PCR反应体系：

注意：
(a) 考虑到PCR产物连接涂板的时候，有部分引物可能会污染菌落，通常做菌落PCR的时候，推荐使用来自克隆载体上的通用引物进行PCR扩增。
(b) 通常引物的终浓度为0.2μM时可获得良好的检测效果，也可以根据情况在0.1-1.0μM范围内调整引物的终浓度。扩增效率不高的情况下，可提高引物的浓度；发生非特异性反应时，可降低引物浓度。
c. 挑取克隆至预先加入了10µl双蒸水或Milli-Q水的无菌离心管中，轻轻吹打混匀或轻微Vortex混匀。
d. 吸取步骤2c配制好的菌落稀释液3μl至步骤2b配制好的17μl PCR反应体系中，轻轻吹打混匀或轻微Vortex混匀，室温低速离心数秒，使液体积聚于管底。
e. 如果所使用的PCR仪有热盖则省略本步骤。如果PCR仪没有热盖，则在管内滴入一滴矿物油(ST275 Mineral oil)。
f. 把设置好的PCR反应管置于PCR仪上，开始PCR反应。
3. PCR反应参数的设置可以参考如下示例
STEP1(起始变性): 94ºC 3min
STEP2(变性): 94ºC 30sec
STEP3(退火): 55ºC 30sec
STEP4(延伸): 72ºC 1min 
STEP5(循环): Go To STEP2 for 30cycles
STEP6(最终延伸): 72ºC 10min
STEP7(临时保存): 4ºC forever 
注意：
a. PCR反应的设置需根据模板、引物、PCR产物的长度和GC含量等条件的不同，设定不同的PCR反应条件包括温度、时间和循环数等。
b. STEP4(延伸)的时间设置需根据PCR产物的长度进行设置，通常每kb产物的延伸时间为1分钟。例如PCR产物的长度为1kb，则延伸时间可以设置为1分钟，PCR产物的长度为2kb，则延伸时间可以设置为2分钟，以此类推。
c. 对于初次进行的PCR，为尽量确保可以扩增出预期的PCR产物，可以把循环数设置为35。对于需进行半定量或定量的PCR反应循环数一定要进行适当优化，使PCR反应没有达到平台期。
4. 结果检测
PCR结束后直接取5-10µl进行电泳检测，无需添加上样缓冲液。
5. 菌落的后续使用
步骤1直接挑取的菌落，可以对平板适当培养后在标记的位置再次挑取克隆后进行扩增培养和质粒提取等；对于步骤2菌落稀释后进行PCR鉴定的情况，可以直接取阳性的菌液进行扩增培养和质粒提取等。

1. 由于PCR反应非常灵敏，可使目的基因扩增超过1000万倍，在设置PCR反应时请注意避免微量待扩增DNA的污染，并尽量考虑设置不加模板的空白对照以确认是否有待扩增DNA的污染。
2. Taq DNA polymerase在PCR过程中每个循环的出错几率约为2.2×10^-5，对于大于1kb的DNA片段的克隆推荐使用出错几率更低的DNA聚合酶，例如Pfu DNA polymerase、BeyoTaq DNA polymerase等。对于普通的PCR或RT-PCR进行定性或定量检测，Taq DNA polymerase是最佳选择。
3. 尽管本产品经过15次反复冻融后仍具有和冻融前几乎相同的PCR扩增效果，但仍宜适当避免反复冻融本产品，多次反复冻融可能使产品性能下降。
4. 使用本产品前，一定要完全融化，并上下颠倒轻轻混匀后才能使用，并尽量避免产生气泡。

5. 本产品仅供科研使用。请勿用于医药、临床诊断或治疗，食品及化妆品等用途。请勿存放于普通住宅区。

6. 为了您的安全和健康，请穿好实验服并佩戴一次性手套和口罩操作。

7. 实验结果可由多种因素影响，相关处理只限于产品本身，不涉及其他赔偿。

备注：由于产品信息可能会有优化升级。请以实际收货标签信息为准。

PCR产物非常少或没有特异性条带。
1. 引物设计不佳是PCR过程中最常见的问题。请选择适当的引物设计软件进行引物设计，注意引物的GC含量、二级结构、二聚体、退火温度、长度、特异性等方面的问题。在加入酶切位点等的引物中，一定要注意加入酶切位点等后整条引物的GC含量、二级结构、二聚体、退火温度、长度、特异性等方面的问题。在原有引物效果不佳的情况并且阳性对照引物可以正常工作的情况下，可以考虑更换引物。
2. 待扩增片段GC含量偏高。GC含量较高的情况下PCR会变得相对比较困难，此时可以使用适合扩增高GC含量DNA片段的GCrich buffer，并相应地根据GC-rich buffer的要求或说明调整PCR反应参数的设置。
3. 长片段扩增。尽管Taq DNA polymerase可以扩增最长达8kb的DNA片段，但大多数时候比较适合扩增2-3kb以下的片段，更长片段的扩增推荐使用其它更适合长片段扩增的DNA聚合酶。
4. PCR反应设置时在室温进行容易导致非特异性条件。推荐在冰浴上设置PCR反应。
5. 由于引物存在一定的二级结构或存在一定的引物二聚体，或引物偏短，导致退火效果不佳。此时可以采用Touch down等方法进行退火，通常采用从65ºC逐步缓慢降温到55ºC或50ºC的方法，使退火更加充分。
6. 退火温度不佳，需要优化。如果有温度梯度PCR仪，则可以设置退火的温度梯度，摸索退火的最佳温度。如果没有温度梯度PCR仪，则可以通过多次PCR反应摸索最佳的退火温度。
7. 延伸时间不足。可按照每1kb片段延伸1分钟进行设置，对于较难扩增的片段可以设置为每1kb片段延伸1.5-2分钟。
8. 待扩增片段GC含量较高或长度较长，变性不够充分。可以调节起始变性条件至95ºC 1min甚至95ºC 2-4min。
9. 在不同PCR仪上进行PCR反应，避免有时PCR仪出现问题。
10. 循环数不足，适当延长PCR的循环数。通常循环数最高不必超过40，常用的循环数范围为25-35。
12. 当产生较多非特异性条带时，可以适当提高退火温度。
13. 注意设置适当的阳性对照和阴性对照通常会有很大帮助。